实 验 目 的
1. 掌握考马斯亮蓝R250染动物细胞胞质微丝的方法。
2. 对细胞内微丝的分布有一个整体上的认识。
实 验 原 理
考马斯亮蓝R250是一种普通的蛋白质染料,它可以使各种细胞骨架蛋白质着色,并非特异地显示微丝,但是由于有些细胞骨架纤维在该实验条件下不够稳定,例如微管;还有些类型的纤维太细,在光学显微镜下无法分辨,因此我们看到的主要是微丝组成的张力纤维,直径约40nm左右。张力纤维形态长而直,常常与细胞的长轴平行并贯穿细胞全长。观察微丝可以用电镜、组织化学、免疫细胞化学等手段,本实验主要介绍用考马斯亮蓝R250显示由微丝组成的张力纤维的实验方法。
染色时用的M-缓冲液,其中咪唑是缓冲剂,EGTA和EDTA螯合Ca2+离子,溶液中并提供Mg2+离子,在此低钙条件下,骨架纤维保持聚合状态并且较为舒张。
实 验 用 品
一、材料 体外培养的动物细胞。
二、试剂
1. 0.01 mol/L 磷酸盐缓冲生物盐水(PBS)配法
0.2mol/L Na2HPO4/KH2PO4缓冲液(pH7.3) 50ml;
NaCl 0.15mol/L;
重蒸馏水至1000ml
其中PB的配法: 0.2mo1/L Na2HPO4 77 ml
0.2mo1/L NaH2PO4 23 ml
2. M-缓冲液
咪唑(imidazole, pH6.7)50mmol/L;
KC1 50mmol/L;
MgCl2 0.5 mmol/L;
EGTA l mmol/L;
EDTA 0.l mmol/L;
巯基乙醇(mercaptoethanol) l mmol/L
甘油 4 mmol/L
用1 mol/L HCl调pH至7.2。
3. 1%的Triton X-l00/M-缓冲液
4. 0.2%考马斯亮蓝R250染液,溶剂是:
甲醇 46.5ml;
冰醋酸 7ml;
蒸馏水 46.5ml
5. 30%戊二醛-PB溶液,pH7.2
三、器材 显微镜、载玻片、35mm小染缸。
实 验 方 法
细胞培养在盖玻片上,生长密度达++~+++时取出
↓
PBS液轻轻涮洗
↓
l% TritonX-l00/M-缓冲液处理l5min(室温或37℃)
(Triton X-l00是非离子型表面活性剂(去污剂),能增加细胞膜通透性并抽提部分杂蛋白质,使骨架图像更清晰)
↓
M-缓冲液轻轻洗细胞3次(稳定细胞骨架)
↓
3%戊二醛-PB液固定细胞5~l5min
↓
PBS液洗细胞若干次
↓滤纸吸干
0.2%考马斯亮蓝R250染片30min
↓
小心地用水漂洗
↓
空气干燥
↓
直接观察或用树脂封片
实 验 结 果
用普通光学显微镜观察,可见到深蓝色的纤维束,粗细不等,基本上平行排布。在成纤维样细胞如CHO、包皮等细胞中,纤维沿细胞长轴排列:而在上皮样细胞,如HeLa等,因细胞呈多边形,张力纤维有交叉,沿不同方向跨越胞体伸向细胞突起处或粘着斑处。
注意:张力纤维是一动态结构,在充分贴壁铺展的细胞中纤维挺直、丰富,形态比较典型;反之,张力纤维收敛略现弯曲;当将贴壁培养的细胞从基质表面除下时,细胞变圆,张力纤维随之消失。